流式細胞儀從細胞技術(shù)開始發(fā)展到今天，60年代至70年代是其飛速發(fā)展時期，激光技術(shù)、噴射技術(shù)以及計算機的應(yīng)用使流式細胞儀在原理和結(jié)構(gòu)上形成了固定的模式。

80年代則是流式細胞儀的商品化時期，這期間不斷有新型號的儀器推出，在多參數(shù)檢測技術(shù)上不斷提高。

進入90年代，隨著微電子技術(shù)特別是計算機技術(shù)的發(fā)展，計算能力不斷提高，流式細胞儀的功能也越來越強大。在數(shù)據(jù)管理、數(shù)據(jù)分析方面有了長足進步。但是，在技術(shù)原理和設(shè)計方面并沒有突破性的進展。人們的注意力開始轉(zhuǎn)向流式細胞儀的應(yīng)用，新的熒光探針、新的熒光染料、新的染色方法不斷推出，使流式細胞技術(shù)在新的細胞參數(shù)分析方面日益發(fā)展。

從新推出的儀器看，流式細胞儀會在硬件上不斷更新，采用更新的器件（如半導(dǎo)體激光、大規(guī)模集成電路），以實現(xiàn)小型化；用數(shù)字電路取代模擬電路，充分發(fā)揮微處理器的醫(yī)`學(xué)教育網(wǎng)搜集整理功能以實現(xiàn)簡單化；在軟件上提高數(shù)據(jù)自動分析能力，充分發(fā)揮圖形界面的優(yōu)點，使操作更加簡便。

目前，F(xiàn)CM是定量周血中HPC的參考方法，廣泛應(yīng)用于外周血干細胞移植 實驗室，用于決定PBSC采集的時機及評價外周血采集液的收益。其基本原理為熒光免疫分析，即根據(jù)外周血與骨髓中HPC表達同樣的CD34抗原（CD34+），并利用熒光標記CD34抗體與HPC膜表面CD34抗原結(jié)合，在特定波長的激光照射下，檢測CD34+胞發(fā)出的熒光強度并結(jié)合其光學(xué)特性，即較低的側(cè)向散射（SSC）和較高的前向散射（FSC），從而檢測CD34+細胞。CD34+細胞實際上包括所有的HPC，如CFU-GM，紅細胞暴發(fā)形成單位（BFU-E），巨核細胞形成單位（CFU-Mk），混合細胞集落形成單位（CFU-Mix）和原始細胞集落形成單位（CFU-Blast）。后兩種HPC明顯具有許多干細胞的特征，如它們可以自我更新，也可定向分化為一定數(shù)目的造血細胞系。體內(nèi)試驗也發(fā)現(xiàn)，經(jīng)過致死劑量照射的狒狒移植足夠數(shù)量的自體CD34+細胞，可以完全恢復(fù)其造血功能，同樣的現(xiàn)象也可在經(jīng)過骨髓、摧毀性治療的病人中出現(xiàn)。有人認為，CD34+細胞在功能上可根據(jù)是否表達CD33抗原而分為2個細胞群。早期的HPC，如CFU-Blast和LTC-IC僅表達Q CD34抗原（CD34+/CD33-），而較為成熟的定向祖細胞可同時表達CD34和CD33抗原（CD34+/CD33+）。還有人根據(jù)CD38抗原表達與否，將CD34+細胞分為CD34+/CD38-和CD34+/CD38+兩個亞型，并且認為LTC-IC主要分布于CD34+/CD38-亞型，而更為原始的ELTC-IC則僅分布于CD34+/CD28-細胞群，說明CD34+/CD38-亞型性質(zhì)上更接近PBSC.回顧性資料表面，移植經(jīng)歷了與移植物中不同分化程度的HPC有關(guān)的兩個階段。起初，與早期造血恢復(fù)有關(guān)的是移植 物中定向祖 細胞（committed progenitor cell）；繼之，持續(xù)性的移植 相由多能造血干細胞產(chǎn)生。因此，周血中不同分化程度的HPC，對指導(dǎo)干細胞采集及移植成功尤為必要。目前多參數(shù)及雙參數(shù)流式細胞低度均可通過CD34、CD33和CD38抗體等檢測標本中不 同CD34+細胞亞型，來決定采血的時機和預(yù)測移植效果。Barnett等報道，采集液CD34+細胞數(shù)量與外周血中CD34+細胞百分率顯著相關(guān)（r=0.71），并且認為準確計數(shù)循環(huán)中CD34+細胞，可更好地預(yù)測采集液中造血干/祖 細胞含量。Weaver等觀察692例患者外周血祖細胞（PBPC）采集液中CD34+細胞、單個核細胞、集落形成單位的數(shù)量與移植動力學(xué)關(guān)系，認為PBPC采集液中CD34+細胞含量是預(yù)移植后中性粒細胞和血小板數(shù)量回升最有力的指標。